Экскреция вакцинных полиовирусов у детей - Воспитанников учреждений закрытого типа


https://doi.org/10.22625/2072-6732-2010-2-1-28-33

Полный текст:


Аннотация

При обследовании 198 здоровых привитых детей из учреждений закрытого типа было выделено 37 вакцинных полиовирусов. Частота выделения полиовирусов в тех домах ребенка, где в числе прочих находились дети, рождённые от ВИЧ-инфицированных матерей, была достоверно выше, чем в других учреждениях. В этих домах ребенка отмечена наиболее длительная экскреция полиовирусов после вакцинации. Анализ профилей RFLP показал, что 41% изученных штаммов являлись межтиповыми рекомбинантами. По результатам секвенирования 29% штаммов имели небольшое число нуклеотидных замен на участке VP3-VP1 вирусного генома. Установлена корреляция между динамикой экскреции полиовирусов после вакцинации ОПВ и динамикой формирования рекомбинантных штаммов полиовирусов. На отдаленных сроках после получения ОПВ все выделенные у детей штаммы представляли собой межтиповые рекомбинанты.


Об авторах

М. А. Бичурина
Санкт-Петербургский НИИЭМ имени Пастера, Санкт-Петербург
Россия

ведущий научный сотрудник лаборатории этиологии и контроля вирусных инфекций Санкт-Петербургского НИИЭМ имени Пастера, тел: (812) 233-21-56



Н. И. Романенкова
Санкт-Петербургский НИИЭМ имени Пастера, Санкт-Петербург
Россия

заведующая лабораторией этиологии и контроля вирусных инфекций Санкт-Петербургского НИИЭМ имени Пастера, тел: (812) 233-21-56



Н. Р. Розаева
Санкт-Петербургский НИИЭМ имени Пастера, Санкт-Петербург
Россия

старший научный сотрудник лаборатории этиологии и контроля вирусных инфекций Санкт-Петербургского НИИЭМ имени Пастера, тел: (812) 233-21-56



Список литературы

1. Бичурина М.А. Итоги сертификации ликвидации полиомиелита на территориях Северо-Западного федерального округа России: аналитический обзор/М.А. Бичурина, Л.В. Лялина, Н.И. Романенкова. — СПб., 2003. — 80 с.

2. Иванова О.Е. Риск развития случаев острого вялого паралича и вакциноассоциированного полиомиелита в закрытых детских коллективах — домах ребенка и детских лечебных стационарах/О.Е. Иванова, Н.И. Романенкова, Т.П. Еремеева и др.// Эпидемиология и вакцинопрофилактика. — 2005. — № 1. — С. 14–18.

3. Проблемы ликвидации полиомиелита: монография/Г.Г. Онищенко и др.. — СПб., 2008. — 303 с.

4. Романенкова Н.И. Дополнительный надзор за циркуляцией полиовирусов и неполиомиелитных энтеровирусов в учреждениях группы риска (дома ребенка)/Н.И. Романенкова, М.А. Бичурина, Н.Р. Розаева//Вестник Российской Военно-медицинской академии. — 2008. — приложение (часть II). — № 2 (22). — С. 550–551.

5. Романенкова Н.И. Изучение штаммов полиовирусов, выделенных от детей, рожденных от ВИЧ-инфицированных матерей/Н.И. Романенкова, Н.Р. Розаева, М.А. Бичурина и др.// Информационный бюллетень МЗ РФ «Здоровье населения и среда обитания». — Москва. — 2004. — № 10. — С. 10–14.

6. Balanant J. The natural genomic variability of poliovirus analyzed by a restriction fragment length polymorphism assay/ J. Balanant, S. Guillot, A. Candrea et al. // Virology. — 1991. — Vol. 184. — P. 645–654.

7. Cammack N. Intertypic genomic rearrangements of poliovirus strains in vaccinees/ N. Cammack, A. Phillips, G. Dunn et al. // Virology. — 1988. — Vol.67. — P.507–514.

8. Cherkasova E.A. Spread of vaccine-derived poliovirus from a paralytic case in an immunodeficient child: an insight into the natural evolution of oral polio vaccine/ E.A. Cherkasova, M.L. Yakovenko, G.V. Rezapkin et al. // J. Virology. — 2005. — Vol.79. — P.1062–1070.

9. Cuervo N. Genomic features of intertypic recombinant Sabin strains excreted by primary vaccines/ N. Cuervo, S. Guillot, N. Romanenkova et al.// J. Virology. — 2001. — Vol.75. — P.5740–5751.

10. Furione M. Polioviruses with natural recombinant genomes isolated from vaccine-associated paralytic poliomyelitis/ M. Furione, S. Guillot, D. Otelea et al. // Virology. — 1993. — Vol. 196. — P.199–208.

11. Gavrilin G.V. Evolution of circulating wild poliovirus and of vaccine-derived poliovirus in an immunodeficient patient: a unifying model/ G.V. Gavrilin, E.A. Cherkasova, G.Y. Lipskaya et al.// J. Virology. — 2000. — Vol. 74. — P.7381–7390.

12. Guillot S. Natural genetic exchanges between vaccine and wild poliovirus strains in humans/ S. Guillot, V. Caro, N. Cuervo et al.// J. Virology. — 2000. — Vol. 74. — P.8434–8443.

13. Kew O.M. Prolonged replication of a type 1 vaccine-derived poliovirus in an immunodeficient patient/ O.M. Kew, R.W. Sutter, B.K. Nottay et al.// J. Clin. Microbiol. — 1998. — Vol. 36. — P.2893–2899.

14. Kew O.M. Outbreak of poliomyelitis in Hispaniola associated with circulating type 1 vaccine-derived poliovirus/ O.M. Kew, V. Morris-Glasgow, M. Landaverde et al. // Science. — 2002. — Vol. 296. — P.356–359.

15. Lipskaya G.Y. Frequent isolation of intertypic poliovirus recombinants with serotype 2 specificity from vaccine-associated polio cases/ G.Y. Lipskaya, A.R. Muzychenko, O.K. Kutitova et al.// J. Med. Virol. — 1991. — Vol. 35. — P.290–296.

16. Nkowane B.M. Vaccine-associated paralytic poliomyelitis. United States 1973 through 1984/ B.M. Nkowane, S.G.F. Wassilak, W.A. Orenstein// J. Amer. Med. Assoc. — 1987. — Vol. 257. — P.1335–1340.

17. Polio laboratory manual. WHO/IVB/04.10.World Health Organization, Geneva, Switzerland. — 2004. — 157 p.

18. Romanenkova N.I. Use of a multiple restriction fragment length polymorphism method for detecting vaccine-derived polioviruses in clinical samples/ N.I. Romanenkova, S. Guillot, N.R. Rozaeva et al.// J. Clin. Microbiol. — 2006. — Vol. 44, N 11. — P. 4077–4084.

19. Rousset D. Recombinant vaccine-derived poliovirus in Madagascar/ D. Rousset, M. Rakoto-Andrianarivelo, R. Razafindratsimandresy et al.// Emerg. Infect. Dis. — 2003. — Vol. 9. — P. 885–887.

20. Shimizu H. Circulation of type 1 vaccine-derived poliovirus in the Philippines in 2001/ H. Shimizu, B. Thorley, F.J. Paladin et al.// J. Virology.— 2004.— Vol.78.— P.13512–13521.

21. Thompson J.D. CLUSTAL W: improving the sensitivity of progressive multiple sequence alignment through sequence weighting, position-specific gap penalties and weight matrix choice/ J.D. Thompson, D.G. Higgins, T.J. Gibson// Nucleic Acids Res. — 1994. —Vol. 22. — P.4673–4680.

22. Van der Avoort H.G. Comparative study of five methods for intratypic differentiation of polioviruses/ H. G. Van der Avoort, B.P. Hull, T. Hovi et al.// J. Clin. Microbiol. — 1995. — Vol. 33. — P.2562–2566.

23. Yang C.F. Detection and identification of vaccine-related polioviruses by the polymerase chain reaction/ C.F. Yang, L. De, B.P. Holloway et al.// Virus Res. — 1991. — Vol. 20. — P.159–179.


Дополнительные файлы

Для цитирования: Бичурина М.А., Романенкова Н.И., Розаева Н.Р. Экскреция вакцинных полиовирусов у детей - Воспитанников учреждений закрытого типа. Журнал инфектологии. 2010;2(1):28-33. https://doi.org/10.22625/2072-6732-2010-2-1-28-33

For citation: Bichurina M.A., Romanenkova N.I., Rozaeva N.R. Excretion of vaccine polioviruses by the children From closed institutions. Journal Infectology. 2010;2(1):28-33. (In Russ.) https://doi.org/10.22625/2072-6732-2010-2-1-28-33

Просмотров: 205

Обратные ссылки

  • Обратные ссылки не определены.


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2072-6732 (Print)
ISSN 2499-9865 (Online)