Носительство метициллин-резистентного золотистого стафилококка в носовой полости в больницах третьего уровня: доказательства внутрибольничной передачи инфекции в Нигерии
https://doi.org/10.22625/2072-6732-2026-18-2-71-79
Аннотация
Носительство метициллин-резистентного золотистого стафилококка (MRSA) в носовой полости является значительным источником инфекции и передачи инфекции в больничных условиях. Эффективный инфекционный контроль и рациональное использование антибиотиков затруднены в странах с низким и средним уровнем дохода из-за отсутствия данных местного мониторинга. В этом исследовании изучались распространенность, характер антимикробной резистентности и генетические детерминанты MRSA у пациентов и медицинских работников в 2 больницах третьего уровня в Нигерии. Всего было собрано 1309 образцов мазков из носовой полости у стационарных пациентов, медицинских работников и амбулаторных пациентов из 2 разных больниц третьего уровня. Золотистый стафилококк был идентифицирован и выделен с использованием стандартных биохимических методов. MRSA были фенотипически обнаружены с использованием хромагара Brilliance MRSA и цефокситина, после чего проводилось тестирование на чувствительность к антимикробным препаратам по стандартному методу дисковой диффузии Кирби – Бауэра. Для скрининга генов mecA и pvl в 10 случайно выбранных образцах MRSA использовались ПЦР-специфические праймеры. Из 1309 собранных образцов из носовой полости было выделено 575 штаммов S. aureus, что составляет 43,9%, из которых 96 (17%) были MRSA, 81 – от стационарных/амбулаторных пациентов и 15 – от медицинских работников. Наибольшее количество MRSA было обнаружено у стационарных пациентов и врачей – 73/81 и 8/15 соответственно. Все изоляты MRSA, устойчивые к цефокситину, также оказались устойчивыми к тетрациклину, амоксициллину и амоксициллину-клавулановой кислоте. Гены mecA и pvl были обнаружены в 5 изолятах. Однако ген pvl был обнаружен в 1 изоляте без соответствующего обнаружения гена mecA. Высокая частота носительства MRSA среди пациентов и медицинского персонала подчеркивает потенциал внутрибольничной передачи инфекции и необходимость усиления инфекционного контроля и рационального использования антибиотиков в нигерийских больницах третьего уровня.
Ключевые слова
Об авторах
C. J. OkoroНигерия
Enugu, Enugu State
Конфликт интересов:
нет
Е. E. David
Нигерия
Abakaliki
Конфликт интересов:
нет
С. S. Iroha
Нигерия
Abakaliki
Конфликт интересов:
нет
С. Ejikeugwu
Нигерия
Enugu, Enugu State
Конфликт интересов:
нет
Е. Dowe
Нигерия
Abraka, Delta State
Конфликт интересов:
нет
Е. F. Nwabueze
Соединённые Штаты Америки
Galveston, TX
Конфликт интересов:
нет
I. R. Iroha
Нигерия
Abakaliki, Ebonyi State
Конфликт интересов:
нет
Список литературы
1. Chambers, Henry F., and Frank R. Deleo. ‘Waves of Resistance: Staphylococcus Aureus in the Antibiotic Era’. Nature Reviews. Microbiology 7, no. 9 (2009): 629–41. https://doi.org/10.1038/nrmicro2200.
2. Lowy, F. D. ‘Staphylococcus Aureus Infections’. The New England Journal of Medicine 339, no. 8 (1998): 520–32. https://doi.org/10.1056/NEJM199808203390806
3. Azzam, Ahmed, Heba Khaled, Heba Mohamed Fayed, et al. ‘Prevalence, Antibiogram, and Risk Factors of Methicillin-Resistant Staphylococcus Aureus (MRSA) Asymptomatic Carriage in Africa: A Systematic Review and Meta-Analysis’. BMC Infectious Diseases 25, no. 1 (2025): 505. https://doi.org/10.1186/s12879-025-10819-4.
4. Cosgrove, Sara E., George Sakoulas, Eli N. Perencevich, Mitchell J. Schwaber, Adolf W. Karchmer, and Yehuda Carmeli. ‘Comparison of Mortality Associated with Methicillin-Resistant and Methicillin-Susceptible Staphylococcus Aureus Bacteremia: A Meta-Analysis’. Clinical Infectious Diseases: An Official Publication of the Infectious Diseases Society of America 36, no. 1 (2003): 53–59. https://doi.org/10.1086/345476.
5. ‘WHO Bacterial Priority Pathogens List, 2024: Bacterial Pathogens of Public Health Importance to Guide Research, Development and Strategies to Prevent and Control Antimicrobial Resistance’. Accessed 4 November 2025. https://www.who.int/publications/i/item/9789240093461?utm_source=chatgpt.com.
6. Touaitia, Rahima, Assia Mairi, Nasir Adam Ibrahim, Nosiba S. Basher, Takfarinas Idres, and Abdelaziz Touati. ‘Staphylococcus Aureus: A Review of the Pathogenesis and Virulence Mechanisms’. Antibiotics 14, no. 5 (2025): 470. https://doi.org/10.3390/antibiotics14050470.
7. Eiff, C. von, K. Becker, K. Machka, H. Stammer, and G. Peters. ‘Nasal Carriage as a Source of Staphylococcus Aureus Bacteremia. Study Group’. The New England Journal of Medicine 344, no. 1 (2001): 11–16. https://doi.org/10.1056/NEJM200101043440102
8. Esther, James, Ogbonna Brian Onyebuchi, Onwuchuluba Ebele Eugenia, et al. ‘Antimicrobial Resistance in Nigeria’s Healthcare System: A Comprehensive Narrative Review and Policy Implications’. Discover Public Health 22, no. 1 (2025): 460. https://doi.org/10.1186/s12982-025-00859-1.
9. Antimicrobial Resistance’. Accessed 4 November 2025. https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/antimicrobial-resistance
10. Turner, Nicholas A., Batu K. Sharma-Kuinkel, Stacey A. Maskarinec, et al. ‘Methicillin-Resistant Staphylococcus Aureus: An Overview of Basic and Clinical Research’. Nature Reviews. Microbiology 17, no. 4 (2019): 203–18. https://doi.org/10.1038/s41579-018-0147-4
11. Cheesbrough, Monica. District Laboratory Practice in Tropical Countries. 2nd edn. Cambridge University Press, 2006. https://doi.org/10.1017/CBO9780511543470.
12. Ofokansi, K. C., M. U. Adikwu, C. O. Esimone, and Martina Nwodo. Indian Journal of Pharmaceutical Sciences. n.d. Accessed 7 November 2025. https://www.ijpsonline.com/.
13. Nawrot, Urszula, Katarzyna Wlodarczyk, Magdalena Wrobel, Anita Wasik, and Tadeusz Dobosz. ‘Comparison of the Utility of Five Commercial Kits for Extraction of DNA from Aspergillus Fumigatus Spores’. Acta Biochimica Polonica 57, no. 4 (2010): 567–71.
14. CLSI, 2012. Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI). Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing; Twenty–Second Information and Supplement M100 –S22-32. Wayne P. A. 62 – 78.
15. Luteijn, J. M., G. a. A. Hubben, P. Pechlivanoglou, M. J. Bonten, and M. J. Postma. ‘Diagnostic Accuracy of CultureBased and PCR-Based Detection Tests for Methicillin-Resistant Staphylococcus Aureus: A Meta-Analysis’. Clinical Microbiology and Infection: The Official Publication of the European Society of Clinical Microbiology and Infectious Diseases 17, no. 2 (2011): 146–54. https://doi.org/10.1111/j.1469-0691.2010.03202.x.
16. ‘Comparing the Efficiency of Taq DNA Polymerase and PuRe Taq Ready-To-Go PCR Beads in Amplifying 12S and 16S Ribosomal Genes’. Accessed 7 November 2025. https://researcherslinks.com/current-issues/Comparing-the-efficiency-of/26/1/1891.
17. Laux, Claudia, Andreas Peschel, and Bernhard Krismer. ‘Staphylococcus Aureus Colonization of the Human Nose and Interaction with Other Microbiome Members’. Microbiology Spectrum 7, no. 2 (n.d.): 10.1128/microbiolspec.gpp3-0029–2018. https://doi.org/10.1128/microbiolspec.gpp3-0029-2018.
18. Castro, A., N. Komora, V. Ferreira, et al. ‘Prevalence of Staphylococcus Aureus from Nares and Hands on Health Care Professionals in a Portuguese Hospital’. Journal of Applied Microbiology 121, no. 3 (2016): 831–39. https://doi.org/10.1111/jam.13186.
19. Garoy, Eyob Yohaness, Yacob Berhane Gebreab, Oliver Okoth Achila, et al. ‘Methicillin-Resistant Staphylococcus Aureus (MRSA): Prevalence and Antimicrobial Sensitivity Pattern among Patients-A Multicenter Study in Asmara, Eritrea’. The Canadian Journal of Infectious Diseases & Medical Microbiology = Journal Canadien Des Maladies Infectieuses Et De La Microbiologie Medicale 2019 (2019): 8321834. https://doi.org/10.1155/2019/8321834.
20. Ec, Okonkwo, Orji Jo, Aondoackaa Ad, et al. ‘Prevalence and Antibiotic Sensitivity Pattern of Staphylococcus Aureus Isolates of Non-Hospital Origin’. Archives of Clinical Microbiology 9, no. 1 (2018). https://doi.org/10.4172/1989-8436.100076.
21. Prevalence and Antibiotic Susceptibility Pattern of Methicillin Resistant Staphylococcus Aureus in Burns and Pressure Ulcer Patients – Afrjcem.Org. 7 March 2019. https://afrjcem.org/prevalence-and-antibiotic-susceptibility-pattern-of-methicillin-resistantstaphylococcus-aureus-in-burns-and-pressure-ulcer-patients/.
22. Du, Jimei, Chun Chen, Baixing Ding, et al. ‘Molecular Characterization and Antimicrobial Susceptibility of Nasal Staphylococcus Aureus Isolates from a Chinese Medical College Campus’. PLOS ONE 6, no. 11 (2011): e27328. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0027328.
23. Sam, I.-Ching, Maria Kahar-Bador, Yoke-Fun Chan, Shih-Keng Loong, and Fadzilah Mohd Nor Ghazali. ‘Multisensitive Community-Acquired Methicillin-Resistant Staphylococcus Aureus Infections in Malaysia’. Diagnostic Microbiology and Infectious Disease 62, no. 4 (2008): 437–39. https://doi.org/10.1016/j.diagmicrobio.2008.07.016.
24. Chen, Chih-Jung, Kuang-Hung Hsu, Tzou-Yien Lin, Kao-Pin Hwang, Po-Yen Chen, and Yhu-Chering Huang. ‘Factors Associated with Nasal Colonization of Methicillin-Resistant Staphylococcus Aureus among Healthy Children in Taiwan’. Journal of Clinical Microbiology 49, no. 1 (2011): 131–37. https://doi.org/10.1128/JCM.01774-10.
25. Braga, Eneida Dias Vianna, F bio Aguiar-Alves, Maria de F tima Nogueira de Freitas, et al. ‘High Prevalence of Staphylococcus Aureus and Methicillin-Resistant S. Aureuscolonization among Healthy Children Attending Public Daycare Centers in Informal Settlements in a Large Urban Center in Brazil’. BMC Infectious Diseases 14, no. 1 (2014): 538. https://doi.org/10.1186/1471-2334-14-538.
26. Denton, M., B. O’Connell, P. Bernard, V. Jarlier, Z. Williams, and A. Santerre Henriksen. ‘The EPISA Study: Antimicrobial Susceptibility of Staphylococcus Aureus Causing Primary or Secondary Skin and Soft Tissue Infections in the Community in France, the UK and Ireland’. The Journal of Antimicrobial Chemotherapy 61, no. 3 (2008): 586–88. https://doi.org/10.1093/jac/dkm531.
27. Taiwo, S. S., M. Bamidele, E. A. Omonigbehin, et al. ‘Molecular Epidemiology of Methicillin-Resistant Staphylococcus Aureus in Ilorin, Nigeria’. West African Journal of Medicine 24, no. 2 (2005): 100–106.
28. Methicilin-Resistant Staphylococcus Aureus (MRSA) at Jos University Teaching Hospital – Afrjcem.Org. 27 February 2019. https://afrjcem.org/methicilin-resistant-staphylococcusaureus-mrsa-at-jos-university-teaching-hospital/.
29. Udeani, T. K., C. J. Onyebuchi, M. C. Ikpenwa, and U. R. Ezenwaka. ‘Prevalence and Antibiotic Susceptibility Pattern of Methicillin Resistant Staphylococcus Aureus in Burns and Pressure Ulcer Patients’. African Journal of Clinical and Experimental Microbiology 17, no. 2 (2016): 130–39. https://doi.org/10.4314/ajcem.v17i2.9.
30. Nwankwo, Emmanuel Onwubiko, and Magaji Sadiq Nasiru. ‘Antibiotic Sensitivity Pattern of Staphylococcus Aureus from Clinical Isolates in a Tertiary Health Institution in Kano, Northwestern Nigeria’. The Pan African Medical Journal 8 (2011): 4. https://doi.org/10.4314/pamj.v8i1.71050.
31. Iyamba, Jean-Marie Liesse, Jos Mulwahali Wambale, Cyprien Mbundu Lukukula, and Ntondo za Balega TakaisiKikuni. ‘High Prevalence of Methicillin Resistant Staphylococci Strains Isolated from Surgical Site Infections in Kinshasa’. The Pan African Medical Journal 18 (2014): 322. https://doi.org/10.11604/pamj.2014.18.322.4440.
32. Khanal, Rita, Prakash Sah, Pramila Lamichhane, Apsana Lamsal, Sweety Upadhaya, and Vijay Kumar Pahwa. ‘Nasal Carriage of Methicillin Resistant Staphylococcus Aureus among Health Care Workers at a Tertiary Care Hospital in Western Nepal’. Antimicrobial Resistance and Infection Control 4, no. 1 (2015): 39. https://doi.org/10.1186/s13756-015-0082-3.
33. Saravolatz, Louis, Joan Pawlak, and Leonard Johnson. ‘In Vitro Activity of Ceftaroline against Community-Associated Methicillin-Resistant, Vancomycin-Intermediate, VancomycinResistant, and Daptomycin-Nonsusceptible Staphylococcus Aureus Isolates’. Antimicrobial Agents and Chemotherapy 54, no. 7 (2010): 3027–30. https://doi.org/10.1128/AAC.01516-09.
34. Llarrull, Leticia I., Jed F. Fisher, and Shahriar Mobashery. ‘Molecular Basis and Phenotype of Methicillin Resistance in Staphylococcus Aureus and Insights into New -Lactams That Meet the Challenge’. Antimicrobial Agents and Chemotherapy 53, no. 10 (2009): 4051–63. https://doi.org/10.1128/AAC.00084-09.
35. Abdullahi, N. and Iregbu, K.C. (2008). Methicillin resisitant Staphylococcus aureus (MRSA) in a Central Nigerian Tertiarly Hospital. Ann.Trop. Pathol, 9: 6 -10.
36. ‘Prevalence of Methicillin-Resistant S. Aureus (MRSA) among Apparently Healthy Students in Afikpo, Ebonyi State, Nigeria’. Issues in Biological Sciences and Pharmaceutical Research, Journal Issues, January 2015. https://journalissues.org/ibspr/abstract/iroha-et-al-january-2015/.
37. Benoit, Stephen R., Concepci n Estivariz, Cristina Mogdasy, et al. ‘Community Strains of Methicillin-Resistant Staphylococcus Aureus as Potential Cause of Healthcare-Associated Infections, Uruguay, 2002-2004’. Emerging Infectious Diseases 14, no. 8 (2008): 1216–23. https://doi.org/10.3201/eid1408.071183.
38. Chambers, Henry F., and Frank R. Deleo. ‘Waves of Resistance: Staphylococcus Aureus in the Antibiotic Era’. Nature Reviews. Microbiology 7, no. 9 (2009): 629–41. https://doi.org/10.1038/nrmicro2200.
39. Funaki, Toshitaka, Tsutomu Yasuhara, Satoshi Kugawa, et al. ‘SCCMec Typing of PVL-Positive Community-Acquired Staphylococcus Aureus (CA-MRSA) at a Japanese Hospital’. Heliyon 5, no. 3 (2019): e01415. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2019.e01415.
Рецензия
Для цитирования:
Okoro C.J., David Е.E., Iroha С.S., Ejikeugwu С., Dowe Е., Nwabueze Е.F., Iroha I.R. Носительство метициллин-резистентного золотистого стафилококка в носовой полости в больницах третьего уровня: доказательства внутрибольничной передачи инфекции в Нигерии. Журнал инфектологии. 2026;18(2):71-79. https://doi.org/10.22625/2072-6732-2026-18-2-71-79
For citation:
Okoro C.J., David E.E., Iroha C.S., Ejikeugwu C., Dowe E., Nwabueze E.F., Iroha I.R. Nasal methicillin-resistant staphylococcus aureus carriage in tertiary hospitals: Evidence of hospitalacquired transmission in Nigeria. Journal Infectology. 2026;18(2):71-79. https://doi.org/10.22625/2072-6732-2026-18-2-71-79
JATS XML


















































.png)
.png)

